Revista Ciencias Técnicas Agropecuarias Vol. 34, January-December 2025, ISSN: 2071-0054
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Cu-ID: https://cu-id.com/2177/v34e29
Original Article

Introduction of a method for estimating organic matter in the field (Bowman, 1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.)

 

iDSol Santander-Mendoza*✉:sol.santander@isuelo.cu

iDLuis A. Gómez-Jorrín

iDLeamnet Sánchez-Pedroso


Instituto de Suelos, Boyeros, La Habana, Cuba. E-mail: gomezjo@isuelos.cu, leamnetsanchezpedroso@gmail.com

 

*Author for correspondence: Sol Santander-Mendoza, e-mail: sol.santander@isuelo.cu

Abstract

Soil organic matter (SOM) is essential for soil health and agricultural productivity, improving physical, chemical, and biological properties. Its measurement is key for sustainable soil management. Traditional methods (Walkley-Black and loss on ignition) have critical limitations in resource-limited environments: the use of toxic and carcinogenic reagents (sulfuric acid, dichromate), complex waste management, high energy consumption, and the requirement for specialized equipment. Given this, the EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid) extraction method proposed by Bowman in 1997 was validated as a safe, rapid, and applicable alternative in situ. The results of both methods were compared in 17 Cuban soil samples with variability in groupings, textures, colors and degree of aggregation, finding i) High linear correlation (R² = 0.76) between optical densities (OD), with OD (EDTA) 2.3 times higher than OD (Walkley-Black), ii) confirmed validity for soils with SOM < 6%, similar to international studies and iii) Elimination of hazardous reagents and reduction of operating costs. In addition, the influence of texture and aggregation percentages were identified as factors that may affect the reading of the values, and pertinent technical recommendations were made. The results support the development of a standardized field kit with local standards, offering a technically robust, safe and accessible solution for SOM monitoring in Cuba.

Keywords: 
Technical Validation, In Situ Medition, Edaphic Indicators

Received: 20/4/2025; Accepted: 18/9/2025

The authors of this work declare no conflict of interests.

Author contributions: Conceptualization: S. Santander-Mendoza, L.A. Gómez-Jorrín. Data curation: S. Santander-Mendoza, L. Sánchez Pedroso. Formal analysis: L.A. Gómez-Jorrín. Investigation: S. Santander-Mendoza, L.A. Gómez-Jorrín. L. Sánchez-Pedroso. Methodology: S. Santander-Mendoza. Supervision: S. Santander-Mendoza, L.A. Gómez-Jorrín. Validation: S. Santander-Mendoza, L.A. Gómez-Jorrín. L. Sánchez-Pedroso. Redacción-borrador original: S. Santander-Mendoza, L.A. Gómez-Jorrín, L. Sánchez-Pedroso. Redacción-revisión y edición: S. Santander-Mendoza y L.A. Gómez-Jorrín.

The mention of trademarks of specific equipment, instruments or materials is for identification purposes, there being no promotional commitment in relation to them, neither by the authors nor by the publisher

CONTENT

Introduction

 

Soil organic matter (SOM) comprises all organic materials of plant or animal origin, in varying degrees of decomposition (Silva and Mendonça, 2007SILVA, I.; MENDONÇA, E.S.: Matéria orgânica do solo, Ed. Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, Novais RF, Alvarez VVH, Barros NF, Fontes RLF, Cantarutti RB, Neves JCL editores Fertilidade do solo ed., Viçosa, MG, Brasil, 275-374 p., 2007.; Nilo, 2019NILO, G.: “Procedimiento operativo estándar para el análisis de carbono orgánico del suelo: Walkley-Black [GLOSOLAN]”, 2019.). In tropical soils, its degradation is faster than in temperate climates due to high temperatures and humidity, resulting from intense rainfall and warm conditions (Ross, 1993ROSS, S.M.: “Organic matter in tropical soils: current conditions, concerns and prospects for conservation”, Progress in physical geography, 17(3): 265-305, 1993, ISSN: 0309-1333.; Craswell and Lefroy, 2001CRASWELL, E.; LEFROY, R.: “The role and function of organic matter in tropical soils”, Nutrient cycling in Agroecosystems, 61(1): 7-18, 2001, ISSN: 1385-1314.; Castro et al., 2015CASTRO, G.S.; CRUSCIOL, C.A.; CALONEGO, J.C.; ROSOLEM, C.A.: “Management impacts on soil organic matter of tropical soils”, Vadose Zone Journal, 14(1): vzj2014-07, 2015, ISSN: 1539-1663.).

Increased soil organic matter content has multiple effects on soil habitats. These include improved soil particle aggregation, resulting in improved soil structure. This, in turn, optimizes air and water movement in the soil and increases its water retention capacity. A more stable soil structure results in less erosion, which retains nutrients and protects water quality. From a chemical perspective, soil organic carbon contributes to soil cation exchange capacity, which is necessary for the retention of nutrients such as calcium, magnesium, and potassium (Van der Wal and de Boer, 2017VAN DER WAL, A.; DE BOER, W.: “Dinner in the dark: illuminating drivers of soil organic matter decomposition”, Soil Biology and Biochemistry, 105: 45-48, 2017, ISSN: 0038-0717.). Furthermore, increased soil organic carbon increases the biomass and diversity of soil biota, as it constitutes a source of nutrients available to these organisms, which, by transforming them, make them available to plants (Nilo, 2019NILO, G.: “Procedimiento operativo estándar para el análisis de carbono orgánico del suelo: Walkley-Black [GLOSOLAN]”, 2019.).

For all these reasons, the determination of organic matter (OM) is essential for the knowledge of soil quality and health, constituting the primary indicator of these (Schloter et al., 2003SCHLOTER, M.; DILLY, O.; MUNCH, J.: “Indicators for evaluating soil quality”, Agriculture, Ecosystems & Environment, 98(1-3): 255-262, 2003, ISSN: 0167-8809.; Weil & Magdoff, 2004WEIL, R.R.; MAGDOFF, F.: “Significance of soil organic matter to soil quality and health”, Soil organic matter in sustainable agriculture, : 1-43, 2004.; Obalum et al., 2017OBALUM, S.; CHIBUIKE, G.; PETH, S.; OUYANG, Y.: “Soil organic matter as sole indicator of soil degradation”, Environmental monitoring and assessment, 189(4): 176, 2017, ISSN: 0167-6369.), and is essential to evaluate the agricultural and forestry productivity of soils (La Manna et al., 2007LA MANNA, L.; BUDUBA, C.; ALONSO, V.; DAVEL, M.; PUENTES, C.; IRISARRI, J.: “Comparación de métodos analíticos para la determinación de materia orgánica en suelos de la región Andino-Patagónica: efectos de la vegetación y el tipo de suelo”, Ciencia del suelo, 25(2): 179-188, 2007, ISSN: 1850-2067.) and to define agricultural management conditions related to tillage, fertilization and irrigation (Reeves, 1997REEVES, D.: “The role of soil organic matter in maintaining soil quality in continuous cropping systems”, Soil and Tillage research, 43(1-2): 131-167, 1997, ISSN: 0167-1987.; Conceição et al., 2005CONCEIÇÃO, P.C.; AMADO, T.J.C.; MIELNICZUK, J.; SPAGNOLLO, E.: “Qualidade do solo em sistemas de manejo avaliada pela dinâmica da matéria orgânica e atributos relacionados”, Revista Brasileira de Ciência do solo, 29: 777-788, 2005, ISSN: 1806-9657.; Roscoe, 2006ROSCOE, R.: “Dinâmica da matéria orgânica do solo em sistemas conservacionistas: modelagem matemática e métodos auxiliares.”, 2006.; Silva and Mendonça, 2007SILVA, I.; MENDONÇA, E.S.: Matéria orgânica do solo, Ed. Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, Novais RF, Alvarez VVH, Barros NF, Fontes RLF, Cantarutti RB, Neves JCL editores Fertilidade do solo ed., Viçosa, MG, Brasil, 275-374 p., 2007.; Madari et al., 2009MADARI, B.E.; CUNHA, T.J.F.; NOVOTNY, E.H.; MILORI, D.; MARTIN, N.L.; BENITES, V.M.; COELHO, M.R.; SANTOS, G.A.: Matéria orgânica dos solos antrópicos da Amazônia (Terra Preta de Índio: suas características e papel na sustentabilidade da fertilidade do solo), Teixeira WG, Kern DC, Madari BE, Lima HN, Woods W, editores. As terras pretas de índio da Amazônia: sua caracterização e uso deste conhecimento na criação de novas áreas ed., Manaus: Embrapa Amazônia Ocidental, Brasil, 172-188 p., 2009.; Souza et al., 2016SOUZA, D.M. de; MORAIS, P.A. de O.; MATSUSHIGE, I.; ROSA, L.A.: “Development of alternative methods for determining soil organic matter”, Revista Brasileira de Ciencia do Solo, 40: e0150150, 2016, ISSN: 1806-9657.).

Among the most widely used analytical methods for quantifying organic carbon in soils are loss on ignition and wet combustion (Walkley-Black, 1934WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934.). Loss on ignition measures the weight loss of a sample when incinerated at 430°C for 24 hours, oxidizing all forms of SOM (Davies, 1974DAVIES, B.E.: “Loss‐on‐ignition as an estimate of soil organic matter”, Soil Science Society of America Journal, 38(1): 150-151, 1974, ISSN: 0361-5995.). This inexpensive and simple method does not require chemical reagents, but it is energy-intensive (La Manna et al., 2007LA MANNA, L.; BUDUBA, C.; ALONSO, V.; DAVEL, M.; PUENTES, C.; IRISARRI, J.: “Comparación de métodos analíticos para la determinación de materia orgánica en suelos de la región Andino-Patagónica: efectos de la vegetación y el tipo de suelo”, Ciencia del suelo, 25(2): 179-188, 2007, ISSN: 1850-2067.).

On the other hand, wet combustion (Walkley-Black, 1934WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934.) uses potassium dichromate in sulfuric acid, partially oxidizing organic carbon. Its underestimation is corrected by factors adjusted for soil type and horizon (Rosell et al., 2001ROSELL, R.; GASPARONI, J.; GALANTINI, J.: “Soil organic matter evaluation”, Assessment methods for soil carbon, : 311-322, 2001.; Certini et al., 2002CERTINI, G.; CORTI, G.; FERNÁNDEZ SANJURJO, M.J.: “Comparison of two soil organic matter extractants and determination of the “Walkley-Black” correction factors for organic fractions from a volcanic soil”, Communications in soil science and plant analysis, 33(5-6): 685-693, 2002, ISSN: 0010-3624.; De Vos et al., 2007DE VOS, B.; LETTENS, S.; MUYS, B.; DECKERS, J.A.: “Walkley-Black analysis of forest soil organic carbon: recovery, limitations and uncertainty”, Soil Use and Management, 23(3): 221-229, 2007, ISSN: 0266-0032.). This method, although limited in coverage, is simple, accessible, and standardized by GLOSOLAN (Nilo, 2019NILO, G.: “Procedimiento operativo estándar para el análisis de carbono orgánico del suelo: Walkley-Black [GLOSOLAN]”, 2019.).

However, it is recognized that the use of this method entails a high risk to human and environmental health. Sulfuric acid (H2SO4, CAS: 7664-93-9) can cause skin burns and generates corrosive, toxic, and irritating vapors. According to Nilo (2019)NILO, G.: “Procedimiento operativo estándar para el análisis de carbono orgánico del suelo: Walkley-Black [GLOSOLAN]”, 2019., it requires that its handling be carried out under an extraction hood and that its waste not be discharged into the drainage system, conditions that can be difficult to meet in Cuban laboratories today. Regarding potassium dichromate (K2Cr2O7, CAS: 7778-50-9), it is noted that it is an inorganic, highly corrosive and strongly oxidizing compound, which emits toxic chromium vapors when heated and due to such characteristics and easy reactivity with combustible materials, it presents high risks in its storage. In addition, it is a known human carcinogen and is associated with an increased risk of lung cancer.

Considering all this, visible and near-infrared (VIS/NIR) spectroscopy has recently been proposed as a proven technique as a rapid and relatively accurate alternative to laboratory analysis of soil properties (Stenberg, 2010STENBERG, B.: “Visible and near infrared spectroscopy in soil science”, Advances in Agronomy, 107: 163-215, 2010, ISSN: 0065-2113, DOI: https://doi.org/10.1016/S0065-2113(10)07005-7.). The main advantages of these techniques are their speed, relative accuracy, and non-destructive nature (Nduwamungu, 2009NDUWAMUNGU, C.; ZIADI, N.; TREMBLAY, G.F.; PARENT, L.-É.: “Near‐infrared reflectance spectroscopy prediction of soil properties: Effects of sample cups and preparation”, Soil Science Society of America Journal, 73(6): 1896-1903, 2009, ISSN: 0361-5995.; Volkan, 2010VOLKAN, A.: “Visible near infrared reflectance spectroscopy for assessment of soil properties in a semi-arid area of Turkey”, Journal of Arid Environments, 74: 229-238, 2010, DOI: https://doi.org/10.1016/j.jaridenv.2009.08.011; Stenberg, 2010STENBERG, B.: “Visible and near infrared spectroscopy in soil science”, Advances in Agronomy, 107: 163-215, 2010, ISSN: 0065-2113, DOI: https://doi.org/10.1016/S0065-2113(10)07005-7.). The main disadvantage is the high cost of the necessary equipment and the high level of specialization required by the personnel involved in this activity.

Furthermore, the current socioeconomic context requires rapid and efficient responses to a large number of farmers from diverse production systems, emphasizing the rational use of material and human resources. In this regard, the implementation of field methods is preferable. These methods require basic steps that are easy to follow by any operator, regardless of their technical level, under field conditions. Therefore, a certain level of precision is often sacrificed in pursuit of simplicity and ease of implementation, through the use of visual observations or portable instruments, which are not as sensitive as laboratory instruments.

For his part, Bowman (1997)BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf. proposes a method for determining organic matter in soil for use in field conditions. This method is based on the extraction capacity of EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid, CAS 60-00-4), which produces a liquid whose color is directly proportional to the intensity of this extraction. Thus, the darker the extract, the higher its organic matter content. Subsequently, the color of the "problem" sample is compared with field standards, soils with known organic matter content, in order to make a rapid and inexpensive semi-quantitative estimate of the organic matter content of the same (using ranges).

Bowman (1997)BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf. also proposes that the sensitivity of this analysis can be increased by filtering the extract and reading its absorbance at 520 nanometers using a spectrophotometer (if portable equipment is available, this can be done in the field). In this case, a calibration curve would be made using the known standards and the value of the organic matter content would be calculated using the regression equation obtained, being a quantitative determination.

EDTA, on the other hand, has low toxicity upon ingestion and is considered a mild skin irritant. It also poses no storage risks. Sodium hydroxide (NaOH, CAS: 1310-73-2), although recognized as an irritant and corrosive material, is used in this method at low concentrations, which reduces the human and environmental risks.

According to this, the following work has two fundamental objectives: i) the validation of the method proposed by Bowman (1997)BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf. in Cuban soils from several groups, comparing the results obtained by this method with those obtained through the Walkey-Black method and ii) preparation of a kit for the estimation of organic matter content in the field, selecting the soils used for standards.

Materials and Methods

 

Seventeen samples were used, the descriptions of which are attached (see Table 1). The selection was based on the greatest possible heterogeneity in terms of the soil groupings represented, textural classes, colors, aggregation percentages, and organic matter content.

The percentage of organic matter was determined in all samples using the wet digestion method, developed by Walkey and Black (1934)WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934. and standardized according to the Cuban standard (NC 51.1999NC 51: Calidad de suelo. Determinación de la materia orgánica, Inst. Oficina Nacional de Normalización La Habana, Cuba., La Habana, Cuba, publisher: Oficina Nacional de Normalización La Habana, Cuba., 1999.), and through EDTA extraction (Bowman, 1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.). For the latter, 5 to 10 grams of dry soil were pulverized in a mortar, 0.5 grams of which was taken, 20 ml of basic EDTA was added and the mixture was shaken vigorously for 30 seconds. This extract was filtered and its absorbance was measured at 520 nm. Subsequently, the percentage of correlation between the results obtained in both cases was calculated using SPSS V. 20.

Table 1.  Selection of samples based on showing the greatest possible heterogeneity in relation to the soil groups represented, textural classes, colors, aggregation percentages and organic matter contents
Sample Study site Coordinates Management Soil taxonomy (Cuban system) Soil taxonomy (WRB)1 The correlation of the Cuban soil classification system (2015) with the World Reference Base (WRB) system was carried out according to Hernández-Jiménez, 2021. Texture pH % aggregation
1 Tbc 010 Viñales, Pinar del Río N 22° 34.376‘ W 83° 42.491‘ Tobacco crop Alítico Rhodic, Xanthic, Alumic Alisol Sandy loam 6,72 20,44
2 Cfg 1020 Manicaragua, Cienfuegos N 22°09.401´ W 80°06.266´ Forest Pardo grisáceo Dystric Cambisol Silt loam 6,08 57,43
3 Vin 1020 Viñales, Pinar del Rio N 22° 34.578‘ W 83° 42.758’ Forest Alítico Rhodic, Xanthic, Alumic Alisol Sandy clay 4,86 77,93
4 Pul 010 Alquízar, Artemisa N 22° 46.399' W 82° 36.463' Common bean crop Ferralítico Ferralic, Rhodic, Lixic, Eutric Nitisol Clayey 6,73 77,79
5 Hbn 010 Hanabanilla, Cienfuegos N 22°06.904´ W 080° 04.845´ Forest Gley Eutric, Clayey, Humic Gleysol Sandy clayey silty 6,30 48,28
6 Tbc 1020 Viñales, Pinar del Río N 22° 34.376‘ W 83° 42.491‘ Tobacco crop Alítico Rhodic, Xanthic, Alumic Alisol Sandy loam 6,68 25,82
7 Tbl 010 Manicaragua, Cienfuegos N 22⁰ 15.772´ W 80⁰ 10.651´ Pastures Pardo grisáceo Dystric Cambisol Sandy clayey silty 6,25 22,46
8 Tbl 1020 Manicaragua, Cienfuegos N 22⁰ 15.772´ W 80⁰ 10.651´ Pastures Pardo grisáceo Dystric Cambisol Sandy clayey silty 6,67 32,14
9 CnVC 1020 Santo Domingo, Villa Clara N 22°38.522´ W 80°14.546´ Sugarcane crop Pardo grisáceo Dystric Cambisol Silt loam 79,83
10 Hlg 010 Antilla, Holguín N 20° 51' 1.76' W 75° 39' 54.29' Forest Vertisol crómico Pellic Vertisol Silty clay 7,47 86,64
11 Hlg 1020 Antilla, Holguín N 20° 51' 1.76' W 75° 39' 54.29' Forest Vertisol crómico Pellic Vertisol Silty clay 7,25 90,59
12 Mq5C2 Empresa Pecuaria Niña Bonita, Artemisa N 22° 59.618' W 82° 30.903 Sugarcanne Gley nodular ferruginoso Petroferric Gleysol Silty clay 7,04 59,62
13 Mq5C3 Empresa Niña Bonita, Artemisa N 22° 59.031' W 82° 30.606' Sugarcane Gley nodular ferruginoso Petroferric Gleysol Silty clay 6,25 61,64
14 Mq6C1 Empresa Niña Bonita, Artemisa N 22° 59.091' W 82° 30.603' Pastures Fersialítico Pardo Rojizo Eutric Cambisol Clayey 7,58 72,45
15 Mq6C3 Empresa Niña Bonita, Artemisa N 22° 59.091' W 82° 30.603' Pastures Fersialítico Pardo Rojizo Eutric Cambisol Clayey 7,26 77,81
16 Mq6C4 Empresa Niña Bonita, Artemisa N 22° 59' 5.46' W 82° 30' 36.47 Pastures Fersialítico Pardo Rojizo Eutric Cambisol Clayey 7,47 75,25
17 PtoBt5 Carretera Bauta Baracoa N 23°1´26.18´´ W 82° 32´58.52´´ Pastures Ferralítico Rojo Compactado Ferralic, Rhodic, Lixic, Eutric Nitisol Clayey 6,55 76,24

Results and Discussion

 

Table 2 shows the results obtained from the two methods for determining the percentage of soil organic matter, measuring the optical density of the extracts at 650 and 520 nm, respectively, as indicated in the protocols for each method.

Table 2.  Values obtained for optical density and organic matter contents, using the methods of Walkey-Black (1934)WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934. and EDTA extraction (Bowman, 1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.)
Sample DO 650 nm (wet digestion) DO 520 nm (EDTA extraction) % SOM Standards
1 Tbc 1020 0.026 0.636 0.99 1%
2 Tbl 1020 0.045 0.689 1.76
3 Tbl 010 0.050 0.739 1.97
4 Tbc 010 0.053 0.659 2.05 2%
5 CnVC 1020 0.056 0.667 2.19
6 Mq6C4 0.070 0.678 2.68 2.5%
7 Pul 010 0.070 0.810 2.70
8 Hlg 010 0.076 0.651 2.92
9 Mq6C3 0.085 0.774 3.27 3%
10 Hlg 1020 0.081 0.724 3.44 3.5%
11 Mq6C1 0.095 0.689 3.62
12 Vin 1020 0.102 0.840 3.88
13 Mq5C2 0.121 0.791 4.57 4.5%
14 BautaP5 0.133 0.775 5.03
15 Cfg 1020 0.144 0.978 5.45 5.5%
16 Mq5C3 0.144 0.841 5.46
17 Hbn 010 0.164 1.004 6.18 ≥5%

Using these values, the equation that shows the existence of a linear correlation between both variables was calculated, whose graph is shown in Figure 1. It shows a directly proportional relationship, obtaining values 2.3 times higher in the optical density of the extract with basic EDTA measured at 520 nm in contrast to those determined in the H2SO4- K2Cr2O7 extract at 650 nm. The correlation coefficient (R2 = 0.76) was similar to that obtained by Card (2004)CARD, S.: Evaluation of two field methods to estimate soil organic matter in Alberta soils, Ed. AESA Soil Quality Monitoring Program AB, Canada, 2004. when making a similar comparison in 41 soils from Alberta, Canada (R2 = 0.67), being this relationship valid in soils with organic matter contents lower than 6%.

Figure 1.  Correlation between optical densities obtained by the Walkey and Black method (1934)WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934. and EDTA extraction (Bowman, 1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.) for the determination of organic matter. The graph shows the results of 54 determinations with a wide range of organic matter contents.

The high correlation coefficients obtained allow this method to be used as an alternative to wet digestion, avoiding the risks associated with handling highly toxic reagents, as well as the environmental impact resulting from the generation of toxic waste.

Regarding the principle of the method, NaOH works by solubilizing organic carbon and EDTA acts as a chelating agent, increasing the efficiency of this process (Bowman and Moir 1993BOWMAN, R.; MOIR, J.: “Basic EDTA as an extractant for soil organic phosphorus”, Soil Science Society of America Journal, 57(6): 1516-1518, 1993, ISSN: 0361-5995.). However, the texture and the percentage and size of soil aggregates can affect the result of the determination, over or underestimating their contents. This occurs due to the physical protective effect of the aggregates on organic matter (Balesdent et al., 2000BALESDENT, J.; CHENU, C.; BALABANE, M.: “Relationship of soil organic matter dynamics to physical protection and tillage”, Soil and tillage research, 53(3-4): 215-230, 2000, ISSN: 0167-1987.; Le Bissonnais, 2023LE BISSONNAIS, Y.: “Soil characteristics and aggregate stability”, En: Soil erosion, conservation, and rehabilitation, Ed. CRC Press, pp. 41-60, 2023.; Even & Cotrufo, 2024EVEN, R.J.; COTRUFO, M.F.: “The ability of soils to aggregate, more than the state of aggregation, promotes protected soil organic matter formation”, Geoderma, 442: 116760, 2024, ISSN: 0016-7061.) and the greater difficulty of dispersion in clayey soils due to their mineralogical characteristics and the interaction of clays with organic matter (Nelson et al., 1999; Plante et al., 2006PLANTE, A.F.; CONANT, R.T.; STEWART, C.E.; PAUSTIAN, K.; SIX, J.: “Impact of soil texture on the distribution of soil organic matter in physical and chemical fractions”, Soil Science Society of America Journal, 70(1): 287-296, 2006, ISSN: 0361-5995.; Huang & Hartemink, 2020HUANG, J.; HARTEMINK, A.E.: “Soil and environmental issues in sandy soils”, Earth-Science Reviews, 208: 103295, 2020, ISSN: 0012-8252.). Thus, we consider that, in soils with a clayey texture, vertic characteristics or high levels of aggregation, the pulverization in the mortar and the stirring and filtration times should be increased.

On the other hand, although there is a high correlation between soil color and its organic matter content (Shulze et al., 1993SCHULZE, D.G.; NAGEL, J.L.; VAN SCOYOC, G.E.; HENDERSON, T.L.; BAUMGARDNER, M.F.; STOTT, D.: “Significance of organic matter in determining soil colors”, Soil color, 31: 71-90, 1993.; Wu et al., 2018WU, C.; XIA, J.; YANG, H.; YANG, Y.; ZHANG, Y.; CHENG, F.: “Rapid determination of soil organic matter content based on soil colour obtained by a digital camera”, International journal of remote sensing, 39(20): 6557-6571, 2018, ISSN: 0143-1161.), the evident differences in soil color related to mineralogical characteristics and pedological processes must also be taken into account in the field implementation of this method.

Conclusions

 

The study demonstrated that determining soil organic matter content using the EDTA extraction method described by Bowman in 1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf. is a simple, economical, and easy-to-implement alternative, both in field and laboratory conditions, enabling rapid and effective responses to this fundamental indicator of soil quality and health. However, there are limitations to its application under specific soil texture, aggregation, and color conditions, which require further analysis in order to propose standardized variations of the methodology.

Note

 
1

The correlation of the Cuban soil classification system (2015) with the World Reference Base (WRB) system was carried out according to Hernández-Jiménez, 2021HERNÁNDEZ, J.A.; PÉREZ, J.; BOSCH, I.D.; CASTRO, S.: “La clasificación de suelos de Cuba: énfasis en la versión de 2015”, Cultivos Tropicales, 40(1): Publisher: Ediciones INCA, 2019, ISSN: 0258-5936..

References

 

BALESDENT, J.; CHENU, C.; BALABANE, M.: “Relationship of soil organic matter dynamics to physical protection and tillage”, Soil and tillage research, 53(3-4): 215-230, 2000, ISSN: 0167-1987.

BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.

BOWMAN, R.; MOIR, J.: “Basic EDTA as an extractant for soil organic phosphorus”, Soil Science Society of America Journal, 57(6): 1516-1518, 1993, ISSN: 0361-5995.

CARD, S.: Evaluation of two field methods to estimate soil organic matter in Alberta soils, Ed. AESA Soil Quality Monitoring Program AB, Canada, 2004.

CASTRO, G.S.; CRUSCIOL, C.A.; CALONEGO, J.C.; ROSOLEM, C.A.: “Management impacts on soil organic matter of tropical soils”, Vadose Zone Journal, 14(1): vzj2014-07, 2015, ISSN: 1539-1663.

CERTINI, G.; CORTI, G.; FERNÁNDEZ SANJURJO, M.J.: “Comparison of two soil organic matter extractants and determination of the “Walkley-Black” correction factors for organic fractions from a volcanic soil”, Communications in soil science and plant analysis, 33(5-6): 685-693, 2002, ISSN: 0010-3624.

CONCEIÇÃO, P.C.; AMADO, T.J.C.; MIELNICZUK, J.; SPAGNOLLO, E.: “Qualidade do solo em sistemas de manejo avaliada pela dinâmica da matéria orgânica e atributos relacionados”, Revista Brasileira de Ciência do solo, 29: 777-788, 2005, ISSN: 1806-9657.

CRASWELL, E.; LEFROY, R.: “The role and function of organic matter in tropical soils”, Nutrient cycling in Agroecosystems, 61(1): 7-18, 2001, ISSN: 1385-1314.

DAVIES, B.E.: “Loss‐on‐ignition as an estimate of soil organic matter”, Soil Science Society of America Journal, 38(1): 150-151, 1974, ISSN: 0361-5995.

DE VOS, B.; LETTENS, S.; MUYS, B.; DECKERS, J.A.: “Walkley-Black analysis of forest soil organic carbon: recovery, limitations and uncertainty”, Soil Use and Management, 23(3): 221-229, 2007, ISSN: 0266-0032.

EVEN, R.J.; COTRUFO, M.F.: “The ability of soils to aggregate, more than the state of aggregation, promotes protected soil organic matter formation”, Geoderma, 442: 116760, 2024, ISSN: 0016-7061.

HERNÁNDEZ, J.A.; PÉREZ, J.; BOSCH, I.D.; CASTRO, S.: “La clasificación de suelos de Cuba: énfasis en la versión de 2015”, Cultivos Tropicales, 40(1): Publisher: Ediciones INCA, 2019, ISSN: 0258-5936.

HUANG, J.; HARTEMINK, A.E.: “Soil and environmental issues in sandy soils”, Earth-Science Reviews, 208: 103295, 2020, ISSN: 0012-8252.

LA MANNA, L.; BUDUBA, C.; ALONSO, V.; DAVEL, M.; PUENTES, C.; IRISARRI, J.: “Comparación de métodos analíticos para la determinación de materia orgánica en suelos de la región Andino-Patagónica: efectos de la vegetación y el tipo de suelo”, Ciencia del suelo, 25(2): 179-188, 2007, ISSN: 1850-2067.

LE BISSONNAIS, Y.: “Soil characteristics and aggregate stability”, En: Soil erosion, conservation, and rehabilitation, Ed. CRC Press, pp. 41-60, 2023.

MADARI, B.E.; CUNHA, T.J.F.; NOVOTNY, E.H.; MILORI, D.; MARTIN, N.L.; BENITES, V.M.; COELHO, M.R.; SANTOS, G.A.: Matéria orgânica dos solos antrópicos da Amazônia (Terra Preta de Índio: suas características e papel na sustentabilidade da fertilidade do solo), Teixeira WG, Kern DC, Madari BE, Lima HN, Woods W, editores. As terras pretas de índio da Amazônia: sua caracterização e uso deste conhecimento na criação de novas áreas ed., Manaus: Embrapa Amazônia Ocidental, Brasil, 172-188 p., 2009.

NC 51: Calidad de suelo. Determinación de la materia orgánica, Inst. Oficina Nacional de Normalización La Habana, Cuba., La Habana, Cuba, publisher: Oficina Nacional de Normalización La Habana, Cuba., 1999.

NDUWAMUNGU, C.; ZIADI, N.; TREMBLAY, G.F.; PARENT, L.-É.: “Near‐infrared reflectance spectroscopy prediction of soil properties: Effects of sample cups and preparation”, Soil Science Society of America Journal, 73(6): 1896-1903, 2009, ISSN: 0361-5995.

NILO, G.: “Procedimiento operativo estándar para el análisis de carbono orgánico del suelo: Walkley-Black [GLOSOLAN]”, 2019.

OBALUM, S.; CHIBUIKE, G.; PETH, S.; OUYANG, Y.: “Soil organic matter as sole indicator of soil degradation”, Environmental monitoring and assessment, 189(4): 176, 2017, ISSN: 0167-6369.

PLANTE, A.F.; CONANT, R.T.; STEWART, C.E.; PAUSTIAN, K.; SIX, J.: “Impact of soil texture on the distribution of soil organic matter in physical and chemical fractions”, Soil Science Society of America Journal, 70(1): 287-296, 2006, ISSN: 0361-5995.

REEVES, D.: “The role of soil organic matter in maintaining soil quality in continuous cropping systems”, Soil and Tillage research, 43(1-2): 131-167, 1997, ISSN: 0167-1987.

ROSCOE, R.: “Dinâmica da matéria orgânica do solo em sistemas conservacionistas: modelagem matemática e métodos auxiliares.”, 2006.

ROSELL, R.; GASPARONI, J.; GALANTINI, J.: “Soil organic matter evaluation”, Assessment methods for soil carbon, : 311-322, 2001.

ROSS, S.M.: “Organic matter in tropical soils: current conditions, concerns and prospects for conservation”, Progress in physical geography, 17(3): 265-305, 1993, ISSN: 0309-1333.

SCHLOTER, M.; DILLY, O.; MUNCH, J.: “Indicators for evaluating soil quality”, Agriculture, Ecosystems & Environment, 98(1-3): 255-262, 2003, ISSN: 0167-8809.

SCHULZE, D.G.; NAGEL, J.L.; VAN SCOYOC, G.E.; HENDERSON, T.L.; BAUMGARDNER, M.F.; STOTT, D.: “Significance of organic matter in determining soil colors”, Soil color, 31: 71-90, 1993.

SILVA, I.; MENDONÇA, E.S.: Matéria orgânica do solo, Ed. Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, Novais RF, Alvarez VVH, Barros NF, Fontes RLF, Cantarutti RB, Neves JCL editores Fertilidade do solo ed., Viçosa, MG, Brasil, 275-374 p., 2007.

SOUZA, D.M. de; MORAIS, P.A. de O.; MATSUSHIGE, I.; ROSA, L.A.: “Development of alternative methods for determining soil organic matter”, Revista Brasileira de Ciencia do Solo, 40: e0150150, 2016, ISSN: 1806-9657.

STENBERG, B.: “Visible and near infrared spectroscopy in soil science”, Advances in Agronomy, 107: 163-215, 2010, ISSN: 0065-2113, DOI: https://doi.org/10.1016/S0065-2113(10)07005-7.

VAN DER WAL, A.; DE BOER, W.: “Dinner in the dark: illuminating drivers of soil organic matter decomposition”, Soil Biology and Biochemistry, 105: 45-48, 2017, ISSN: 0038-0717.

VOLKAN, A.: “Visible near infrared reflectance spectroscopy for assessment of soil properties in a semi-arid area of Turkey”, Journal of Arid Environments, 74: 229-238, 2010, DOI: https://doi.org/10.1016/j.jaridenv.2009.08.011

WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934.

WEIL, R.R.; MAGDOFF, F.: “Significance of soil organic matter to soil quality and health”, Soil organic matter in sustainable agriculture, : 1-43, 2004.

WU, C.; XIA, J.; YANG, H.; YANG, Y.; ZHANG, Y.; CHENG, F.: “Rapid determination of soil organic matter content based on soil colour obtained by a digital camera”, International journal of remote sensing, 39(20): 6557-6571, 2018, ISSN: 0143-1161.

Annex 1. Procedure for determining carbon in the field.

 

Equipment.

  • Scoop with an approximate measurement of 0.5 g

  • Mortar and pestle

  • Tubes with lids

  • Cut filter paper

  • Funnels

  • 25 ml graduated cylinder

Reagents:

  • Distilled water

  • 0.25 M sodium hydroxide (NaOH) (10 g/L)

  • 0.05 M disodium EDTA (Na2EDTA) (18.6 g/L)

  • Basic EDTA: Mix NaOH and Na2EDTA in equal proportions (v/v)

Previously, six soils with varying SOM contents (1%, 2%, 2.5%, 3%, 3.5%, 4%, 4.5%, 5%, and greater than 5%) were identified, calculated using the EDTA extraction method with spectrophotometer reading, which will serve as standards (Table 1). Variations from these standards should be easily distinguishable by field workers.

Annex 2. (A) Equipment required to carry out the qualitative method for determining organic matter in the field (Bowman, 1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.). (B) Standards prepared for use.

 

To perform the determination, a dry soil sample will be taken and ground. Then, using a spoon, a sample of approximately 0.5 g will be taken and mixed with 20 ml of basic EDTA, shaking vigorously for 30 seconds, and then filtered. The color of the resulting mixture will be visually compared with the standards to determine the percentage of organic matter by comparison.


Revista Ciencias Técnicas Agropecuarias Vol. 34, January-December 2025, ISSN: 2071-0054
 
Artículo Original

Introducción de un método de estimación del contenido de materia orgánica en el campo (Bowman, 1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.)

 

iDSol Santander-Mendoza*✉:sol.santander@isuelo.cu

iDLuis A. Gómez-Jorrín

iDLeamnet Sánchez-Pedroso


Instituto de Suelos, Boyeros, La Habana, Cuba. E-mail: gomezjo@isuelos.cu, leamnetsanchezpedroso@gmail.com

 

*Autora para correspondencia: Sol Santander-Mendoza, e-mail: sol.santander@isuelo.cu

Resumen

La materia orgánica del suelo (MOS) es fundamental para la salud edáfica y la productividad agrícola, al mejorar propiedades físicas, químicas y biológicas, siendo su medición clave para un manejo sostenible de los suelos. Los métodos tradicionales (Walkley-Black y pérdida por ignición) presentan limitaciones críticas en entornos con recursos limitados: uso de reactivos tóxicos y cancerígenos (ácido sulfúrico, dicromato), manejo complejo de residuos, alto consumo energético y requerimiento de equipos especializados. Ante esto, se validó el método de extracción con EDTA (ácido etilendiaminotetraacético) propuesto por Bowman en 1997, como alternativa segura, rápida y aplicable in situ. Se compararon los resultados de ambos métodos en 17 muestras de suelos cubanos con variabilidad en agrupamientos, texturas, colores y grado de agregación, encontrándose i) Alta correlación lineal (R² = 0.76) entre las densidades ópticas (DO), con DO (EDTA) 2.3 veces superiores a DO (Walkley-Black), ii) validez confirmada para suelos con MOS < 6%, similar a estudios internacionales y iii) Eliminación de reactivos peligrosos y reducción de costos operativos. Se identificó además la influencia de la textura, los porcentajes de agregación como factores que pueden afectar la lectura de los valores, realizándose las recomendaciones técnicas pertinentes. Los resultados sustentan el desarrollo de un kit de campo estandarizado con estándares locales, ofreciendo una solución técnicamente robusta, segura y accesible para el monitoreo de la MOS en Cuba.

Palabras clave: 
validación técnica, medición in situ, indicadores edáficos

Introducción

 

La materia orgánica del suelo (MOS) comprende todos los materiales orgánicos de origen vegetal o animal, en diferentes grados de descomposición (Silva y Mendonça, 2007SILVA, I.; MENDONÇA, E.S.: Matéria orgânica do solo, Ed. Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, Novais RF, Alvarez VVH, Barros NF, Fontes RLF, Cantarutti RB, Neves JCL editores Fertilidade do solo ed., Viçosa, MG, Brasil, 275-374 p., 2007.; Nilo, 2019NILO, G.: “Procedimiento operativo estándar para el análisis de carbono orgánico del suelo: Walkley-Black [GLOSOLAN]”, 2019.). En suelos tropicales, su degradación es más rápida que en climas templados debido a temperaturas y humedades elevadas, resultado de precipitaciones intensas y condiciones cálidas (Ross, 1993ROSS, S.M.: “Organic matter in tropical soils: current conditions, concerns and prospects for conservation”, Progress in physical geography, 17(3): 265-305, 1993, ISSN: 0309-1333.; Craswell y Lefroy, 2001CRASWELL, E.; LEFROY, R.: “The role and function of organic matter in tropical soils”, Nutrient cycling in Agroecosystems, 61(1): 7-18, 2001, ISSN: 1385-1314.; Castro et al., 2015CASTRO, G.S.; CRUSCIOL, C.A.; CALONEGO, J.C.; ROSOLEM, C.A.: “Management impacts on soil organic matter of tropical soils”, Vadose Zone Journal, 14(1): vzj2014-07, 2015, ISSN: 1539-1663.).

El incremento en los contenidos de materia orgánica del suelo genera múltiples efectos en el suelo como hábitat. Entre éstos se encuentran la mejoría en la agregación de partículas del suelo, lo cual resulta en una mejor estructura. Esta a su vez, permite optimizar el movimiento de aire y agua en el suelo, y el aumento de la capacidad de retención de ésta última. Una estructura del suelo más estable resulta en menor erosión, lo cual retiene nutrientes y protege la calidad de agua. Desde el punto de vista químico, el carbono orgánico del suelo contribuye a la capacidad de intercambio catiónico del mismo, la cual es necesaria para la retención de nutrientes tales como calcio, magnesio y potasio (van der Wal y De Boer, 2017VAN DER WAL, A.; DE BOER, W.: “Dinner in the dark: illuminating drivers of soil organic matter decomposition”, Soil Biology and Biochemistry, 105: 45-48, 2017, ISSN: 0038-0717.). Por otra parte, el aumento del carbono orgánico del suelo incrementa la biomasa y diversidad de la biota del suelo, al constituir la fuente de nutrientes disponible para estos organismos, los cuales, al transformarlos, los hacen disponibles para las plantas (Nilo, 2019NILO, G.: “Procedimiento operativo estándar para el análisis de carbono orgánico del suelo: Walkley-Black [GLOSOLAN]”, 2019.).

Por todas estas razones, la determinación de la materia orgánica (MO) resulta fundamental para el conocimiento de la calidad y salud del suelo, constituyendo el indicador primario de éstas (Schloter et al., 2003SCHLOTER, M.; DILLY, O.; MUNCH, J.: “Indicators for evaluating soil quality”, Agriculture, Ecosystems & Environment, 98(1-3): 255-262, 2003, ISSN: 0167-8809.; Weil y Magdoff, 2004WEIL, R.R.; MAGDOFF, F.: “Significance of soil organic matter to soil quality and health”, Soil organic matter in sustainable agriculture, : 1-43, 2004.; Obalum et al., 2017OBALUM, S.; CHIBUIKE, G.; PETH, S.; OUYANG, Y.: “Soil organic matter as sole indicator of soil degradation”, Environmental monitoring and assessment, 189(4): 176, 2017, ISSN: 0167-6369.), y es indispensable para evaluar la productividad agrícola y forestal de los suelos (La Manna et al., 2007LA MANNA, L.; BUDUBA, C.; ALONSO, V.; DAVEL, M.; PUENTES, C.; IRISARRI, J.: “Comparación de métodos analíticos para la determinación de materia orgánica en suelos de la región Andino-Patagónica: efectos de la vegetación y el tipo de suelo”, Ciencia del suelo, 25(2): 179-188, 2007, ISSN: 1850-2067.) y definir condiciones de manejo agrícola relacionadas con la labranza, la fertilización y el riego (Reeves, 1997REEVES, D.: “The role of soil organic matter in maintaining soil quality in continuous cropping systems”, Soil and Tillage research, 43(1-2): 131-167, 1997, ISSN: 0167-1987.; Conceição et al., 2005CONCEIÇÃO, P.C.; AMADO, T.J.C.; MIELNICZUK, J.; SPAGNOLLO, E.: “Qualidade do solo em sistemas de manejo avaliada pela dinâmica da matéria orgânica e atributos relacionados”, Revista Brasileira de Ciência do solo, 29: 777-788, 2005, ISSN: 1806-9657.; Roscoe, 2006ROSCOE, R.: “Dinâmica da matéria orgânica do solo em sistemas conservacionistas: modelagem matemática e métodos auxiliares.”, 2006.; Silva y Mendonça, 2007SILVA, I.; MENDONÇA, E.S.: Matéria orgânica do solo, Ed. Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, Novais RF, Alvarez VVH, Barros NF, Fontes RLF, Cantarutti RB, Neves JCL editores Fertilidade do solo ed., Viçosa, MG, Brasil, 275-374 p., 2007.; Madari et al., 2009MADARI, B.E.; CUNHA, T.J.F.; NOVOTNY, E.H.; MILORI, D.; MARTIN, N.L.; BENITES, V.M.; COELHO, M.R.; SANTOS, G.A.: Matéria orgânica dos solos antrópicos da Amazônia (Terra Preta de Índio: suas características e papel na sustentabilidade da fertilidade do solo), Teixeira WG, Kern DC, Madari BE, Lima HN, Woods W, editores. As terras pretas de índio da Amazônia: sua caracterização e uso deste conhecimento na criação de novas áreas ed., Manaus: Embrapa Amazônia Ocidental, Brasil, 172-188 p., 2009.; Souza et al., 2016SOUZA, D.M. de; MORAIS, P.A. de O.; MATSUSHIGE, I.; ROSA, L.A.: “Development of alternative methods for determining soil organic matter”, Revista Brasileira de Ciencia do Solo, 40: e0150150, 2016, ISSN: 1806-9657.).

Entre los métodos analíticos más usados para cuantificar carbono orgánico en suelos destacan la pérdida por ignición y la combustión húmeda (Walkley y Black, 1934WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934.). La pérdida por ignición mide la pérdida de peso de una muestra al incinerarla a 430 ºC por 24 horas, oxidando la MOS en todas sus formas (Davies, 1974DAVIES, B.E.: “Loss‐on‐ignition as an estimate of soil organic matter”, Soil Science Society of America Journal, 38(1): 150-151, 1974, ISSN: 0361-5995.). Este método, económico y sencillo, no requiere el uso de reactivos químicos, pero es energéticamente demandante (La Manna et al., 2007LA MANNA, L.; BUDUBA, C.; ALONSO, V.; DAVEL, M.; PUENTES, C.; IRISARRI, J.: “Comparación de métodos analíticos para la determinación de materia orgánica en suelos de la región Andino-Patagónica: efectos de la vegetación y el tipo de suelo”, Ciencia del suelo, 25(2): 179-188, 2007, ISSN: 1850-2067.).

Por otro lado, la combustión húmeda (Walkley y Black, 1934WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934.) emplea dicromato de potasio en ácido sulfúrico, oxidando parcialmente el carbono orgánico. Se corrige su subestimación mediante factores ajustados según tipo y horizonte del suelo (Rosell et al., 2001ROSELL, R.; GASPARONI, J.; GALANTINI, J.: “Soil organic matter evaluation”, Assessment methods for soil carbon, : 311-322, 2001.; Certini et al., 2002CERTINI, G.; CORTI, G.; FERNÁNDEZ SANJURJO, M.J.: “Comparison of two soil organic matter extractants and determination of the “Walkley-Black” correction factors for organic fractions from a volcanic soil”, Communications in soil science and plant analysis, 33(5-6): 685-693, 2002, ISSN: 0010-3624.; De Vos et al., 2007DE VOS, B.; LETTENS, S.; MUYS, B.; DECKERS, J.A.: “Walkley-Black analysis of forest soil organic carbon: recovery, limitations and uncertainty”, Soil Use and Management, 23(3): 221-229, 2007, ISSN: 0266-0032.). Este método, aunque limitado en cobertura, es sencillo, accesible y estandarizado por GLOSOLAN (Nilo, 2019NILO, G.: “Procedimiento operativo estándar para el análisis de carbono orgánico del suelo: Walkley-Black [GLOSOLAN]”, 2019.).

Sin embargo, se reconoce que el uso de este método implica un riesgo elevado para la salud humana y ambiental. El ácido sulfúrico (H2SO4, CAS: 7664-93-9) puede ocasionar quemaduras en la piel y genera vapores corrosivos, tóxicos e irritantes. De acuerdo a (Nilo, 2019NILO, G.: “Procedimiento operativo estándar para el análisis de carbono orgánico del suelo: Walkley-Black [GLOSOLAN]”, 2019.) requiere que su manipulación sea realizada bajo campana de extracción y que sus residuos no sean descargados al sistema de desagües, condiciones que pueden ser difíciles de cumplir en los laboratorios cubanos en la actualidad. En cuanto al dicromato de potasio (K2Cr2O7, CAS: 7778-50-9) se señala que es un compuesto inorgánico, altamente corrosivo y fuertemente oxidante, que emite vapores tóxicos de cromo por calentamiento y debido a tales características y fácil reactividad con materiales combustibles presenta elevados riesgos en su almacenamiento. Además, es un conocido carcinógeno humano y se encuentra asociado con un mayor riesgo a contraer cáncer de pulmón. Considerando todo esto, la espectroscopia de visible e infrarrojo cercano VIS/NIR se ha propuesto recientemente en una técnica probada como método alternativo rápido y relativamente preciso de los análisis de laboratorio de las propiedades del suelo (Stenberg, 2010STENBERG, B.: “Visible and near infrared spectroscopy in soil science”, Advances in Agronomy, 107: 163-215, 2010, ISSN: 0065-2113, DOI: https://doi.org/10.1016/S0065-2113(10)07005-7.). Estas técnicas poseen como principales ventajas su rapidez, relativa precisión y su carácter no destructivo (Nduwamungu et al., 2009NDUWAMUNGU, C.; ZIADI, N.; TREMBLAY, G.F.; PARENT, L.-É.: “Near‐infrared reflectance spectroscopy prediction of soil properties: Effects of sample cups and preparation”, Soil Science Society of America Journal, 73(6): 1896-1903, 2009, ISSN: 0361-5995.; Stenberg, 2010STENBERG, B.: “Visible and near infrared spectroscopy in soil science”, Advances in Agronomy, 107: 163-215, 2010, ISSN: 0065-2113, DOI: https://doi.org/10.1016/S0065-2113(10)07005-7.; Volkan, 2010VOLKAN, A.: “Visible near infrared reflectance spectroscopy for assessment of soil properties in a semi-arid area of Turkey”, Journal of Arid Environments, 74: 229-238, 2010, DOI: https://doi.org/10.1016/j.jaridenv.2009.08.011), y como desventaja fundamental el elevado costo de los equipos necesarios y la alta especialización que requiere el personal dedicado a esta actividad.

Por otra parte, el contexto socioeconómico actual requiere ofrecer respuestas rápidas y eficientes a un elevado número de agricultores provenientes de diversas formas productivas, enfatizando el uso racional de recursos materiales y humanos. En este sentido, resulta preferente la implementación de métodos de campo, los cuales se caracterizan por requerir pasos básicos que sean fáciles de seguir por cualquier operador, independientemente de su nivel técnico, en condiciones de campo. Por lo tanto, suele sacrificarse cierto nivel de precisión en búsqueda de la simplicidad y la facilidad de implementación, a través del uso de observaciones visuales o con instrumentos portátiles, que no son tan sensibles como el instrumental de laboratorio.

Por su parte, Bowman (1997)BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf. propone un método para la determinación de materia orgánica en suelo para ser utilizado en condiciones de campo. Dicho método está basado en la capacidad de extracción del EDTA (ácido etilendiaminotetraacético, CAS 60-00-4) donde se obtiene un líquido cuyo color es directamente proporcional a la intensidad de esta extracción. Así, mientras más oscuro es el extracto, mayor es su contenido de materia orgánica. Posteriormente, se realiza la comparación del color de la muestra “problema” con estándares de campo, suelos cuyo contenido de materia orgánica es conocido, a fin de realizar una estimación rápida y poco costosa del contenido de materia orgánica del mismo, de tipo semicuantitativo (empleando rangos).

Bowman (1997)BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf. también propone que la sensibilidad de este análisis puede incrementarse filtrando el extracto y leyendo su absorbancia a 520 nanómetros, empleando un espectrofotómetro (si se cuenta con un equipo portátil, esto puede realizarse en campo). En este caso, se realizaría una curva de calibración empleando los estándares conocidos y el valor del contenido de la materia orgánica se calcularía mediante el uso de la ecuación de la regresión obtenida, tratándose de una determinación cuantitativa.

Por su parte, el EDTA presenta baja toxicidad por ingestión y se considera un irritante medio de la piel, y no presenta riesgos asociados a su almacenamiento. El hidróxido de sodio (NaOH, CAS: 1310-73-2) si bien es reconocido como un material irritante y corrosivo, en este método es empleado a bajas concentraciones, lo que disminuye el riesgo humano y ambiental de este método.

De acuerdo a esto, el siguiente trabajo tiene dos objetivos fundamentales: i) la validación del método propuesto por Bowman (1997)BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf. en suelos cubanos provenientes de varios agrupamientos, comparando los resultados obtenidos por este método con los obtenidos a través del método de Walkey y Black y ii) confección de un kit para la estimación del contenido de materia orgánica en campo, seleccionando los suelos empleados para estándares.

Materiales y Métodos

 

Se utilizaron 17 muestras cuya descripción se anexa (Tabla 1). La selección se realizó en función de mostrar la mayor heterogeneidad posible en relación a los agrupamientos de suelos representados, las clases texturales, colores, porcentajes de agregación y contenidos de materia orgánica.

A todas las muestras se les determinó el porcentaje de materia orgánica tanto por el método de digestión húmeda, desarrollado por Walkley y Black (1934)WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934. y estandarizado según norma cubana (NC 51, 1999NC 51: Calidad de suelo. Determinación de la materia orgánica, Inst. Oficina Nacional de Normalización La Habana, Cuba., La Habana, Cuba, publisher: Oficina Nacional de Normalización La Habana, Cuba., 1999.), como a través de la extracción con EDTA (Bowman, 1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.). Para esto último, se pulverizó en un mortero entre 5 a 10 gramos de suelo seco, se tomaron 0,5 gramos del mismo, se añadieron 20 ml de EDTA básico y se agitó vigorosamente por 30 segundos. Este extracto se filtró y se midió su absorbancia a 520 nm. Posteriormente, se calculó el porcentaje de correlación entre los resultados obtenidos en ambos casos, empleando el programa SPSS V. 20.

Tabla 1.  Selección de las muestras en función de mostrar la mayor heterogeneidad posible en relación a los agrupamientos de suelos representados, las clases texturales, colores, porcentajes de agregación y contenidos de materia orgánica
Muestra Lugar Coordenadas Manejo Agrupamiento WRB1 La correlación con del sistema de clasificación cubano de suelos (2015) con el sistema World Reference Base (WRB) fue realizada de acuerdo a (Hernández et al., 2019). Textura pH % agregación
1 Tbc 010 Viñales, Pinar del Río N 22° 34.376‘ W 83° 42.491‘ Cultivo de tabaco Alítico Rhodic, Xanthic, Alumic Alisol Franco arenoso 6,72 20,44
2 Cfg 1020 Manicaragua, Cienfuegos N 22°09.401´ W 80°06.266´ Bosque Pardo grisáceo Dystric Cambisol Franco limoso 6,08 57,43
3 Vin 1020 Viñales, Pinar del Rio N 22° 34.578‘ W 83° 42.758’ Bosque Alítico Rhodic, Xanthic, Alumic Alisol Arcillo arenoso 4,86 77,93
4 Pul 010 Alquízar, Artemisa N 22° 46.399' W 82° 36.463' Cultivo de frijol Ferralítico Ferralic, Rhodic, Lixic, Eutric Nitisol Arcilloso 6,73 77,79
5 Hbn 010 Hanabanilla, Cienfuegos N 22°06.904´ W 080° 04.845´ Bosque Gley Eutric, Clayey, Humic Gleysol Are arc limoso 6,30 48,28
6 Tbc 1020 Viñales, Pinar del Río N 22° 34.376‘ W 83° 42.491‘ Cultivo de tabaco Alítico Rhodic, Xanthic, Alumic Alisol Franco arenoso 6,68 25,82
7 Tbl 010 Manicaragua, Cienfuegos N 22⁰ 15.772´ W 80⁰ 10.651´ Pastos naturales Pardo grisáceo Dystric Cambisol Are arc limoso 6,25 22,46
8 Tbl 1020 Manicaragua, Cienfuegos N 22⁰ 15.772´ W 80⁰ 10.651´ Pastos naturales Pardo grisáceo Dystric Cambisol Are arc limoso 6,67 32,14
9 CnVC 1020 Santo Domingo, Villa Clara N 22°38.522´ W 80°14.546´ Cultivo de caña de azúcar Pardo grisáceo Dystric Cambisol Franco limoso 79,83
10 Hlg 010 Antilla, Holguín N 20° 51' 1.76' W 75° 39' 54.29' Bosque Vertisol crómico Pellic Vertisol Arcillo limoso 7,47 86,64
11 Hlg 1020 Antilla, Holguín N 20° 51' 1.76' W 75° 39' 54.29' Bosque Vertisol crómico Pellic Vertisol Arcillo limoso 7,25 90,59
12 Mq5C2 Empresa Pecuaria Niña Bonita, Artemisa N 22° 59.618' W 82° 30.903 Caña de azúcar (en barbecho) Gley nodular ferruginoso Petroferric Gleysol Arcillo limoso 7,04 59,62
13 Mq5C3 Empresa Niña Bonita, Artemisa N 22° 59.031' W 82° 30.606' Caña de azúcar (en barbecho) Gley nodular ferruginoso Petroferric Gleysol Arcillo limoso 6,25 61,64
14 Mq6C1 Empresa Niña Bonita, Artemisa N 22° 59.091' W 82° 30.603' Pastos naturales Fersialítico Pardo Rojizo Eutric Cambisol Arcilloso 7,58 72,45
15 Mq6C3 Empresa Niña Bonita, Artemisa N 22° 59.091' W 82° 30.603' Pastos naturales Fersialítico Pardo Rojizo Eutric Cambisol Arcilloso 7,26 77,81
16 Mq6C4 Empresa Niña Bonita, Artemisa N 22° 59' 5.46' W 82° 30' 36.47 Pastos naturales Fersialítico Pardo Rojizo Eutric Cambisol Arcilloso 7,47 75,25
17 PtoBt5 Carretera Bauta Baracoa N 23°1´26.18´´ W 82° 32´58.52´´ Pastos naturales Ferralítico Rojo Compactado Ferralic, Rhodic, Lixic, Eutric Nitisol Arcilloso 6,55 76,24

Resultados y Discusión

 

En la Tabla 2 se muestran los resultados obtenidos al aplicar los dos métodos de determinación del porcentaje de materia orgánica del suelo, midiendo la densidad óptica de los extractos a 650 y 520 nm respectivamente, de acuerdo a señalado en los protocolos de cada método.

Tabla 2.  Valores obtenidos de densidad óptica y contenidos de materia orgánica, empleando los métodos de Walkley y Black (1934)WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934. y extracción por EDTA Bowman (1997)BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.
Muestra DO 650 nm (digestión húmeda) DO 520 nm (extracción EDTA) % MOS Estándares
1 Tbc 1020 0.026 0.636 0.99 1%
2 Tbl 1020 0.045 0.689 1.76
3 Tbl 010 0.050 0.739 1.97
4 Tbc 010 0.053 0.659 2.05 2%
5 CnVC 1020 0.056 0.667 2.19
6 Mq6C4 0.070 0.678 2.68 2.5%
7 Pul 010 0.070 0.810 2.70
8 Hlg 010 0.076 0.651 2.92
9 Mq6C3 0.085 0.774 3.27 3%
10 Hlg 1020 0.081 0.724 3.44 3.5%
11 Mq6C1 0.095 0.689 3.62
12 Vin 1020 0.102 0.840 3.88
13 Mq5C2 0.121 0.791 4.57 4.5%
14 BautaP5 0.133 0.775 5.03
15 Cfg 1020 0.144 0.978 5.45 5.5%
16 Mq5C3 0.144 0.841 5.46
17 Hbn 010 0.164 1.004 6.18 ≥5%

Utilizando estos valores, se calculó la ecuación que evidencia la existencia de una correlación de tipo lineal entre ambas variables, cuya gráfica se muestra en la Figura 1. En esta se evidencia una relación directamente proporcional, obteniéndose valores 2,3 veces mayores en la densidad óptica del extracto con EDTA básico medido a 520 nm en contraste a los determinados en el extracto H2SO4- K2Cr2O7 a 650 nm. El coeficiente de correlación (R2= 0,76) resultó similar al obtenido por (Card, 2004CARD, S.: Evaluation of two field methods to estimate soil organic matter in Alberta soils, Ed. AESA Soil Quality Monitoring Program AB, Canada, 2004.) al realizar una comparación parecida en 41 suelos de Alberta, Canadá (R2= 0,67), siendo válida dicha relación en suelos con contenidos de materia orgánica inferiores al 6%.

Figura 1.  Correlación entre las densidades ópticas obtenidas por el método de Walkley y Black (1934WALKLEY, A.; BLACK, I.: “Anexamination of the Degtjareff method and a proposed modification of thechromic matter and a proposed modification of thechromic acid titration method”, Soil Science, 37: 29-38, 1934.) y extracción por EDTA Bowman (1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.) para la determinación de materia orgánica.

El grafico muestra el resultado de 54 determinaciones con amplio rango de contenidos de materia orgánica.

Los elevados resultados obtenidos en los coeficientes de correlación permiten utilizar este método como alternativa a la digestión húmeda, evitando los riesgos asociados a la manipulación de reactivos de elevada toxicidad, así como el impacto ambiental proveniente de la generación de residuales tóxicos.

En cuanto al principio del método, el NaOH trabaja solubilizando el carbón orgánico y el EDTA actúa como quelante, incrementando la eficiencia de este proceso (Bowman y Moir, 1993BOWMAN, R.; MOIR, J.: “Basic EDTA as an extractant for soil organic phosphorus”, Soil Science Society of America Journal, 57(6): 1516-1518, 1993, ISSN: 0361-5995.). No obstante, la textura y el porcentaje y tamaño de los agregados del suelo, puede afectar el resultado de la determinación, sobre o subestimando sus contenidos. Ello ocurre debido al efecto protector físico de los agregados sobre la materia orgánica (Balesdent et al., 2000BALESDENT, J.; CHENU, C.; BALABANE, M.: “Relationship of soil organic matter dynamics to physical protection and tillage”, Soil and tillage research, 53(3-4): 215-230, 2000, ISSN: 0167-1987.; Le Bissonnais, 2023LE BISSONNAIS, Y.: “Soil characteristics and aggregate stability”, En: Soil erosion, conservation, and rehabilitation, Ed. CRC Press, pp. 41-60, 2023.; Even y Cotrufo, 2024EVEN, R.J.; COTRUFO, M.F.: “The ability of soils to aggregate, more than the state of aggregation, promotes protected soil organic matter formation”, Geoderma, 442: 116760, 2024, ISSN: 0016-7061.) y a la mayor dificultad de dispersión existente en los suelos arcillosos debido a sus características mineralógicas y la interacción de las arcillas con la materia orgánica (Plante et al., 2006PLANTE, A.F.; CONANT, R.T.; STEWART, C.E.; PAUSTIAN, K.; SIX, J.: “Impact of soil texture on the distribution of soil organic matter in physical and chemical fractions”, Soil Science Society of America Journal, 70(1): 287-296, 2006, ISSN: 0361-5995.; Nduwamungu et al., 2009NDUWAMUNGU, C.; ZIADI, N.; TREMBLAY, G.F.; PARENT, L.-É.: “Near‐infrared reflectance spectroscopy prediction of soil properties: Effects of sample cups and preparation”, Soil Science Society of America Journal, 73(6): 1896-1903, 2009, ISSN: 0361-5995.; Huang y Hartemink, 2020HUANG, J.; HARTEMINK, A.E.: “Soil and environmental issues in sandy soils”, Earth-Science Reviews, 208: 103295, 2020, ISSN: 0012-8252.). Así, consideramos que, en los suelos con textura arcillosa, características vérticas o altos niveles de agregación debe incrementarse la pulverización en el mortero y los tiempos de agitación y filtración.

Por otra parte, si bien existe una elevada correlación entre el color del suelo y su contenido de materia orgánica (Schulze et al., 1993SCHULZE, D.G.; NAGEL, J.L.; VAN SCOYOC, G.E.; HENDERSON, T.L.; BAUMGARDNER, M.F.; STOTT, D.: “Significance of organic matter in determining soil colors”, Soil color, 31: 71-90, 1993.; Wu et al., 2018WU, C.; XIA, J.; YANG, H.; YANG, Y.; ZHANG, Y.; CHENG, F.: “Rapid determination of soil organic matter content based on soil colour obtained by a digital camera”, International journal of remote sensing, 39(20): 6557-6571, 2018, ISSN: 0143-1161.), las evidentes diferencias de coloración del suelo relacionada con características mineralógicas y de procesos pedológicos también deben ser tomadas en cuenta en la implementación en campo de este método.

Conclusiones

 

El trabajo realizado permitió evidenciar que la determinación del contenido de materia orgánica en el suelo a través del método de extracción con EDTA referido por Bowman en 1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf. constituye una alternativa sencilla, económica y de fácil implementación, tanto en condiciones de campo como de laboratorio, haciendo posible ofrecer respuestas rápidas y eficaces en relación a este indicador fundamental de la calidad y salud del suelo. No obstante, existen limitaciones a su aplicación en condiciones determinadas de textura, agregación y coloración del suelo, que deben ser analizadas con mayor detalle con la finalidad de proponer variaciones estandarizadas de la metodología.

Nota

 
1

La correlación con del sistema de clasificación cubano de suelos (2015) con el sistema World Reference Base (WRB) fue realizada de acuerdo a (Hernández et al., 2019HERNÁNDEZ, J.A.; PÉREZ, J.; BOSCH, I.D.; CASTRO, S.: “La clasificación de suelos de Cuba: énfasis en la versión de 2015”, Cultivos Tropicales, 40(1): Publisher: Ediciones INCA, 2019, ISSN: 0258-5936.).

Anexo 1. Procedimiento para la determinación de carbono en campo

 

Equipamiento.

  • Cuchara con medida aproximada de 0.5 g

  • Mortero y pistilo

  • Tubos con tapas.

  • Papel de filtro cortado

  • Embudos

  • Cilindro graduado de 25 ml.

  • Gradilla.

Reactivos:

  • Agua destilada.

  • Hidróxido de sodio (NaOH) 0,25 M (10g/L)

  • Sal de disodio EDTA (Na2EDTA) 0,05M (18,6 g/L)

  • EDTA básico: mezclar NaOH y Na2EDTA en proporciones iguales (v/v)

Anteriormente, se identificaron seis suelos con contenidos variables de MOS (1%, 2%, 2,5%, 3%, 3,5%, 4%, 4,5%, 5%, y mayor a 5%) calculado mediante el método de extracción con EDTA con lectura de espectrofotómetro, los cuales servirán como estándares (Tabla 1). Las variaciones de estos estándares deben ser fácilmente distinguibles para los operadores de campo.

Anexo 2. (A) Equipamiento necesario para llevar a cabo el método de determinación cualitativa de materia orgánica en campo (Bowman 1997BOWMAN, R.: Field Methods to Estimate Soil Organic Matter, [en línea], 1997, Disponible en: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30100000/1990-1999documents/336%201997%20Bowman%20Conserv%20Tillage%20Fact%20Sht.pdf.). (B) Estándares preparados para su utilización.

 

Para realizar la determinación, se tomará una muestra de suelo seco y se procederá a moler. Luego, con la cuchara se tomará una muestra aproximada de 0,5 g, la cual se mezclará con 20 ml de EDTA básico, agitando vigorosamente por 30 segundos, tras lo que se procederá a filtrar. El color de la mezcla obtenida se comparará visualmente con los estándares a fin de determinar el porcentaje de materia orgánica por comparación.