Efecto de los Microorganismos Eficientes en el rendimiento biológico de plántulas de henequén en vivero

INTRODUCCIÓN

Las áreas dedicadas al cultivo del henequén con que cuenta hoy la provincia de Matanzas presentan un elevado grado de deterioro, con una disminución gradual de los campos cultivados y carencia de plántulas de calidad debido esencialmente al mal manejo de las plantaciones y a la desaparición de los viveros, lo que ha provocado una reducción significativa en la producción de fibras (Cruz, 2021Cruz, M. O. (2021). Recuperación de las potencialidades de la producción henequenera en Matanzas [Trabajo de Diploma (en opción al título de Ingeniero Agrónomo)]. Universidad de Matanzas, Matanzas, Cuba.).

La principal vía de propagación del henequén es la asexual a través de los hijos basales o del rizoma y de los bulbillos producidos por la inflorescencia, y en los últimos años se han desarrollado tecnologías para la propagación a escala de laboratorio. Cada una de estas vías asexuales de propagación presenta ventajas y desventajas y es precisamente su utilización racional lo que puede contribuir a que en menor tiempo se logren plantaciones de henequén homogéneas y de alta calidad en el país (E. Abreu, 2009Abreu, E. (2009). Aclimatización de plántulas de henequén (Agave fourcroydes Lem.) y su evaluación en la etapa de previvero. La Habana [Tesis (en opción al grado científico de Doctor en Ciencias Agrícolas)]. Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas, La Habana, Cuba.).

Por las características fisiológicas de esta especie, la fase de vivero es una etapa fundamental en cualquiera de las vías. La estancia de las plántulas en estas condiciones es necesaria para que, en un ambiente más favorable para ellas, puedan alcanzar en el menor tiempo posible y de manera uniforme el patrón de calidad establecido para pasar a plantación permanente (Minag-Cuba, 2016Minag-Cuba. (2016). Instructivo técnico del cultivo del Henequén (Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”). Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”, Quivican, Mayabeque, Cuba.).

Por otra parte, la mala calidad del material de propagación con que cuentan las unidades de base productoras de henequén en Matanzas, así como la falta o deficientes atenciones culturales presentes hoy en estas entidades por la falta de recursos, hacen que el tiempo de permanencia de las plántulas esté entre 18 y 20 meses, todo lo cual sugiere que la posibilidad de buscar alternativas para acelerar su desarrollo durante esta etapa aportaría mejores beneficios económicos para la empresa, no solo por la disminución de su tiempo de estancia, sino también por una mayor calidad en el material de siembra que se lleva a los campos, lo que repercutiría en la recuperación de las plantaciones, en el rendimiento del cultivo y en la calidad de las fibras.

Con este argumento, el empleo de productos estimuladores del crecimiento de origen natural que promuevan el crecimiento y desarrollo de las plántulas durante la fase de vivero, puede constituir una vía para aumentar el rendimiento biológico del cultivo, lo que asegura lograr los aspectos anteriores, así como garantizar una mayor eficiencia y rentabilidad en todo el proceso.

En el presente trabajo se evalúa el empleo de los microorganismos eficientes (ME) que son reconocidos como un grupo de microorganismos benéficos presentes en el suelo para crear un ambiente favorable y mejorar el crecimiento y salud en diferentes cultivos, en henequén no se ha informado sobre el empleo de este producto en ninguna de sus fases de desarrollo. Es por ello que el objetivo de esta investigación es evaluar el efecto biológico de los ME en plántulas de henequén durante la fase de vivero con el empleo de tres dosis.

MATERIALES Y MÉTODOS

La investigación se desarrolló en el vivero de la Unidad Empresarial de Base (UEB) “Antonio Berdalles”, perteneciente a la Empresa Nacional de Fibras Naturales; ubicada en el municipio Limonar, Matanzas. El experimento se desarrolló entre el 19 de junio del 2021 al 16 de septiembre del 2022.

En los estudios se utilizaron plántulas de rizomas recolectadas de las plantaciones comerciales, de la variedad Sac Ki o henequén blanco, las plántulas fueron seleccionadas de manera que mostraran un adecuado vigor vegetativo, buen estado fitosanitario y la mayor uniformidad posible en cuanto a su tamaño, número de hojas y grosor del tallo (Tabla 1).

El experimento se desarrolló sobre suelo Ferralítico rojo poco profundo, rocoso, en un área total de 144 m².

Se utilizó un diseño experimental Bloque al azar con cuatro tratamientos y cuatro réplicas, establecidos de la siguiente forma:

Las unidades experimentales se conformaron de 25 plántulas con un marco de plantación de 0,40 x 0,20 m. Cuatro repeticiones para cada tratamiento (16 unidades experimentales totales).

En el período de desarrollo evaluado se hicieron cuatro aplicaciones (19 de junio, 21 de octubre y 3 de diciembre del 2021 y 26 de enero del 2022). Para ello se utilizó una mochila Matabi de 16 L de capacidad total, la aplicación fue realizada de forma manual y lo más homogénea posible sobre las plántulas

Las evaluaciones se realizaron en dos momentos diferentes del ciclo del vivero (a los cuatro meses de establecido el vivero y al final de la etapa, 14 meses). Con estos resultados se evaluó la dinámica de crecimiento y desarrollo. Para ello se determinaron los siguientes indicadores morfológicos y fisiológicos:

La información obtenida fue procesada según el paquete estadístico Statgraphic plus 5.1 sobre WINDOWS. Se comprobó el ajuste a una distribución normal mediante la prueba de Bondad de Ajuste Kolmogorov-Smirnov y la homogeneidad de varianza mediante las Pruebas de Bartlett (Sigarroa, 1985Sigarroa, A. (1985). Biometría y diseño experimental. Editorial Pueblo y Educación, La Habana, Cuba., 2006Sigarroa, A. (2006). Manual de prácticas de biometría y diseño experimental. Editorial Félix Varela.). En los casos en que los datos cumplieron los requisitos exigidos se procesaron mediante ANOVA de clasificación simple y se utilizó la Prueba de Rangos Múltiples de Duncan para la comparación entre medias. Para los datos que no cumplieron con estas premisas, se utilizó la Prueba de Kruskal-Wallis y las medias fueron comparadas mediante la Prueba de Rangos Múltiples de Student-Newman-Kwels (SNK) (p <0,05).

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Las Figuras 1 a la 4, reflejan el comportamiento de la dinámica de crecimiento de las plántulas a partir de los indicadores evaluados. Cada figura muestra en dos gráficos (A y B), el valor absoluto alcanzado por cada variable y la magnitud del incremento mensual en los dos momentos de muestreo seleccionados para medir el desarrollo de las plántulas (4 meses y 14 meses), el periodo de 14 meses coincide con el tiempo total de duración del vivero y etapa experimental.

La Figura 1 refleja el comportamiento en cuanto a la altura de las plántulas.

Como se observa tanto en el gráfico A (tamaño alcanzado por las plántulas), como en el B (ritmo de crecimiento mensual), no existe diferencia estadísticamente significativa entre los tratamientos en ninguno de los dos momentos de muestreo (4 meses y 14 meses), y para todos los tratamientos por igual las plántulas alcanzaron el tamaño mínimo necesario (45-50 cm) para ser trasplantada a plantación permanente, de acuerdo con los patrones establecidos por el instructivo técnico de este cultivo Minag-Cuba (2016)Minag-Cuba. (2016). Instructivo técnico del cultivo del Henequén (Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”). Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”, Quivican, Mayabeque, Cuba., el cual tiene su fundamento teórico en las características morfofisiológicas de los Agaves (García & Serrano, 2022García, S., & Serrano, H. (2022). Agave fourcroydes (Lem.) y sus nuevas perspectivas. TecnoAgro, 78. https://tecnoagro.com.mx/no.-78/agave-fourcroydes-lem-y-sus-nuevas-perspectivas; Terry et al., 2015Terry, E. C., Castellanos, G. L., & Hernández Herrera, R. (2015). Posibilidades del henequén Agave fourcroydes Lemaire para el control de plagas en los cultivos. Revista Científica Agroecosistemas, 3(2), 514-524, ISSN: 2415-2862.).

No obstante, se observa que hubo un incremento en el ritmo de crecimiento mensual en el intervalo de cuatro a 14 meses, con respecto al intervalo inicial (0-4 meses), este último enmarcado en el periodo de julio a octubre, lo que puede explicarse por los efectos del trasplante en la etapa inicial del vivero, que induce estrés en las plántulas por la extracción de su hábitat natural en el ecosistema donde se desarrollan, y por la manipulación de este propágulo para ser establecida en el vivero. En el intervalo que se enmarca a partir del 5^to mes, hasta los 14 meses, las plántulas reciben los efectos de los períodos pocos lluviosos y lluviosos de acuerdo con las condiciones climáticas de Cuba Abreu (2009)Abreu, E. (2009). Aclimatización de plántulas de henequén (Agave fourcroydes Lem.) y su evaluación en la etapa de previvero. La Habana [Tesis (en opción al grado científico de Doctor en Ciencias Agrícolas)]. Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas, La Habana, Cuba., lo que las favorece en una etapa (periodo lluvioso) y lo contrario en la otra (periodo poco lluvioso), pero ya ocurre en condiciones biológicas en que las plántulas pueden expresar su potencial fisiológico, como se muestra en la propia Figura 1, lo que les permite mantener el ritmo normal de desarrollo de la especie.

En el comportamiento de esta variable, a pesar de haber alcanzado en 14 meses el patrón de calidad para su salida a plantación permanente, como se refiere en el instructivo técnico Minag-Cuba (2016)Minag-Cuba. (2016). Instructivo técnico del cultivo del Henequén (Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”). Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”, Quivican, Mayabeque, Cuba., no se puede afirmar que hubo un efecto marcado de los beneficios que aportan los microorganismos eficientes (ME) cuando se asocian con los cultivos agrícolas, como ha sido informado por diferentes autores (Calero et al., 2018Calero, H. A., Quintero, R. E., Olivera, V. D., Pérez, D. Y., Castro, L. I., Aguilar, O. J. R., & López, D. E. (2018). Respuesta de dos cultivares de frijol común a la aplicación foliar de microorganismos eficientes. Cultivos Tropicales, 39(3), 5-10, ISSN: 0258-5936, Publisher: Ediciones INCA., 2019Calero, H. A., Quintero, R. E., Pérez, D. Y., Olivera, V. D., Peña, C. K., & Jiménez, H. J. (2019). Efecto entre microorganismos eficientes y fitomas-e en el incremento agroproductivo del frijol. Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial, 17(1), 25-33, ISSN: 1692-3561, Publisher: Universidad del Cauca, Vicerrectoría de Investigaciones.). Resultados similares en el comportamiento de esta variable para el cultivo del henequén en condiciones de vivero también fueron reportados por Bertrán (2019)Bertrán, S. L. (2019). Evaluación del bioestimulador QuitoMax® en el rendimiento biológico de posturas de henequén (Agave fourcroydes Lem.) durante la fase de vivero. [Trabajo de Diploma (en opción al título de Ingeniero Agrónomo)]. Universidad de Matanzas. Facultad de Ciencias Agropecuarias. con el empleo de diferentes dosis del estimulador QuitoMax, ambos autores lo justifican a partir de las características fisiológicas del cultivo, por ser esta una planta xerófita de crecimiento lento, que no refleja de manera rápida en su morfología, en un periodo corto de tiempo, cambios significativos en algunas de sus variables del desarrollo, por la acción estimulante del producto que se aplique, además de considerar la mala calidad del material de plantación presente hoy en los campos de henequén, aunque siempre se procede a su selección inicial en campo.

Referente al número de hojas (No. de hojas), los resultados se presentan en la Figura 2.

De la misma manera que para la variable altura, en el número de hojas no se refleja diferencia estadísticamente significativa en ninguno de los momentos evaluados, sin embargo hay una tendencia a un comportamiento más favorable en los tratamientos en que se emplean los microorganismos eficientes, que puede tener su efecto final en el comportamiento de variables mas integrales para expresar el crecimiento y desarrollo de las plantas como es el área foliar, presentado en la Figura 3, donde sí se observa diferencia estadísticamente significativa entre los tratamientos, a favor de un efecto significativo del empleo de los microorganismos eficientes, aunque en este caso con un nivel de confiabilidad del 90% (p< 0,1).

En el número de hojas los valores que se alcanzan a los 14 meses (Figura 2 A) muestran valores propicios para el desarrollo del cultivo en todos los tratamientos por igual, de acuerdo con los parámetros establecidos en el instructivo técnico Minag-Cuba (2016)Minag-Cuba. (2016). Instructivo técnico del cultivo del Henequén (Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”). Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”, Quivican, Mayabeque, Cuba., donde se plantea que el número de hojas no debe ser inferior a 15.

El comportamiento en cuanto al ritmo de crecimiento (Figura 2 B) tiene una expresión similar a la que tuvo con la variable altura referente a su incremento mensual, lo que también puede explicarse a partir del mismo análisis hecho anteriormente referente a las características del cultivo, que incide de manera integral en el metabolismo de la planta y puede reflejarse de forma similar en toda la morfología externa.

En este sentido es importante señalar que el cultivo del henequén en condiciones favorables de temperatura y humedad puede emitir entre dos y tres hojas mensuales, donde estaría expresando su mayor potencial (Otero, 1999Otero, B. (1999). El cultivo del henequén (Agave fourcroydes, Lem) como planta textil y su aprovechamiento integral. Temas de Ciencia y Tecnología, 3(9), 23-46.). De acuerdo con los resultados que se muestran en la figura, en el periodo de cuatro a 14 meses, los tratamientos en que se emplean los microorganismos eficientes, exhiben valores promedios superiores a 1,6 hojas mensuales, mientras que el control no llega a 1,5 hojas. En relación a esta respuesta puede decirse de modo general que todos los valores son favorables, si igualmente se considera que en el periodo de cuatro a 14 meses influyen condiciones favorables y poco favorables de acuerdo con las condiciones climáticas de Cuba, como ya se explicó en el comportamiento de la variable altura.

Referente a la dinámica de emisión de hojas en el cultivo del henequén en condiciones de vivero, Bertrán (2019)Bertrán, S. L. (2019). Evaluación del bioestimulador QuitoMax® en el rendimiento biológico de posturas de henequén (Agave fourcroydes Lem.) durante la fase de vivero. [Trabajo de Diploma (en opción al título de Ingeniero Agrónomo)]. Universidad de Matanzas. Facultad de Ciencias Agropecuarias. refiere que durante los primeros 120 días después del trasplante a vivero, el promedio en el ritmo de emisión de nuevas hojas fue inferior a una hoja por mes, sin embargo después de los 120 días y hasta los 196, se presenta un incremento bien marcado en la emisión de las nuevas hojas, con una tasa que estuvo cercana a las 1,5 hojas mensuales, lo que coincide con los resultados obtenidos en este estudio.

En el área foliar la diferencia estadísticamente significativa que se menciona entre los tratamientos, se presentó tanto para los dos momentos de muestreo, como para las dos formas en que se evaluaron los indicadores medidos (valor total alcanzado e incremento mensual). En cuanto al valor total alcanzado, a los cuatro meses, a pesar de la diferencia significativa que se destaca, no se puede definir concretamente una mejor respuesta de las plántulas por efecto de los ME, sin embargo a los 14 meses los mejores resultados se exhiben a favor de las variantes donde se emplean los microorganismos eficientes en dosis de 20 y 30 L/ha^-1 (Tratamientos 1 y 2), por el contrario el valor más bajo se presentó en el tratamiento control (Tratamiento 4), que difiere significativamente de los tratamientos 1 y 2; por su parte el tratamiento 3 (40 L/ha^-1) aparece con valores intermedios que no difieren estadísticamente del resto.

En relación al incremento mensual del área foliar (Figura 3 B) el comportamiento entre los tratamientos es muy similar al mostrado para el valor total alcanzado (Figura 3 A) en los dos momentos de muestreo. Las plántulas que recibieron las dosis de 20 y 30 L/ha^-1 de ME desarrollaron mayor capacidad para producir nueva biomasa, comparadas con el tratamiento control donde no fueron tratadas con los ME.

Es importante señalar que en correspondencia con el comportamiento que se destaca de este indicador en el análisis hecho anteriormente, otro elemento que puede estar a favor de los beneficios que se les atribuyen a los ME, es que con las dosis de 20 y 30 L/ha^-1, las plántulas incrementaron en más de tres veces el valor que mostraban a los cuatro meses y por el contrario en el tratamiento control no llega a duplicarse este valor para el mismo intervalo.

Referente al grosor del tallo (Figura 4), no se observó diferencia estadísticamente significativa entre los tratamientos para ninguno de los dos momentos de muestreo, ni para los dos indicadores evaluados (grosor total alcanzado e incremento medio mensual). Diferente al comportamiento de los demás indicadores, el incremento en el grosor del tallo en el periodo de cuatro a 14 meses fue inferior que en los primeros cuatro meses después del trasplante para el vivero, lo que pudo estar dado por el tipo de crecimiento de esta especie (crecimiento en roseta, con el meristemo en la parte superior del tallo a partir de donde se emiten las hojas nuevas), característico en planta xerófita, ello hace que el incremento en la biomasa del tallo no solo se exprese en mayor volumen de su diámetro, sino que también se expresa en la altura que va alcanzando este órgano en la medida que va emitiendo nuevas hojas, el cual no fue evaluado en esta investigación, como pudo haber sucedido en los tratamientos 1 y 2 donde las plántulas desarrollaron un mayor área foliar, como consecuencia de un incremento en la altura y en el número de hojas. Inclusive en la dinámica de crecimiento de esta planta, referente a las modificaciones que va mostrando el tallo, se plantea que a partir de los cuatro o cinco años en que la planta está lista para su explotación comercial, este órgano alcanza 20 cm de diámetro, momento en el cual su diámetro no aumenta más y solamente crece en su parte inferior (Minag-Cuba, 2016Minag-Cuba. (2016). Instructivo técnico del cultivo del Henequén (Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”). Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”, Quivican, Mayabeque, Cuba.).

Como bien ha sido destacado por diferentes autores Bertrán (2019)Bertrán, S. L. (2019). Evaluación del bioestimulador QuitoMax® en el rendimiento biológico de posturas de henequén (Agave fourcroydes Lem.) durante la fase de vivero. [Trabajo de Diploma (en opción al título de Ingeniero Agrónomo)]. Universidad de Matanzas. Facultad de Ciencias Agropecuarias. y Terry et al. (2015)Terry, E. C., Castellanos, G. L., & Hernández Herrera, R. (2015). Posibilidades del henequén Agave fourcroydes Lemaire para el control de plagas en los cultivos. Revista Científica Agroecosistemas, 3(2), 514-524, ISSN: 2415-2862., el grosor del tallo es un indicador de referencia para la calidad de las plántulas en el cultivo del henequén, esta estructura además de ser el órgano de sostén o eje de la planta donde se insertan las hojas, en él se acumulan un gran número de sustancias de reservas imprescindibles para su desarrollo. El instructivo técnico de este cultivo Minag-Cuba (2016)Minag-Cuba. (2016). Instructivo técnico del cultivo del Henequén (Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”). Instituto de Investigaciones Hortícolas “Liliana Dimitrova”, Quivican, Mayabeque, Cuba. establece diferentes categorías de plántulas para su establecimiento en el vivero a partir del grosor del tallo y la altura. De acuerdo con estos criterios, las plántulas con mayor diámetro basal e igual talla (altura), se desarrollan más rápidamente, sin embargo, para su salida del vivero y establecimiento en plantación permanente los indicadores que exige el instructivo técnico y que marcan el patrón de calidad, son la altura de la plántula y el número de hojas.

Referente al éxito del uso de los ME en el cultivo del henequén, puede decirse que los resultados mostrados indican efectos positivos con el empleo de este biofertilizante, como se constata en el comportamiento del área foliar (figura 3), lo que pudo haber estado asociado fundamentalmente a un aumento de la capacidad fotosintética y por la mayor presencia potencial de sustancias sintetizadas a causa de baterías autótrofas, las que comprenden aminoácidos, ácidos nucleicos, sustancias bioactivas y azúcares, que promueven el crecimiento y desarrollo de las plántulas, además, la posibilidad de un mayor saneamiento del área cultivada, ya que consumen los exudados de raíces, hojas, flores y frutos, evitando la propagación de organismos patógenos y desarrollo de enfermedades (Silva, 2009Silva, M. (2009). Microbiología General. http://microbiologia-general.blogspot.com/2009/05/microorganismos-eficientes.html).

En este sentido los ME son considerados como un grupo de microorganismos benéficos que son cultivados y utilizados como medio para mejorar las condiciones de los suelos, suprimir los microorganismos productores de enfermedades, y aumentar la eficiencia en la utilización de la materia orgánica por parte de los cultivos (EEAITAJ, 2013EEAITAJ. (2013). Microorganismos Eficaces (EM). Estación Experimental Agropecuaria para la Introducción de Tecnologías Apropiadas de Japón (EEAITAJ). https://goo.gl/PXqAuy).

Diferentes investigaciones realizadas han demostrado que el empleo de los ME como biofertilizantes en las tecnologías para las producciones agrícolas pueden mejorar, el crecimiento, producción y calidad de los cultivos, así como la calidad del suelo (Abreu et al., 2021Abreu, R. A., Urgelles, C. I., Abreu, R. N., Díaz, R. A., & Hernández, G. K. (2021). Efecto de los Microorganismos Eficientes (ME) en el crecimiento y desarrollo del cultivo del frijol en condiciones de campo. Hombre, Ciencia y Tecnología, 25(3), 104-110, ISSN: 1028-0871.; Calero et al., 2018Calero, H. A., Quintero, R. E., Olivera, V. D., Pérez, D. Y., Castro, L. I., Aguilar, O. J. R., & López, D. E. (2018). Respuesta de dos cultivares de frijol común a la aplicación foliar de microorganismos eficientes. Cultivos Tropicales, 39(3), 5-10, ISSN: 0258-5936, Publisher: Ediciones INCA.; Milian et al., 2014Milian, M. P. R., González, R. J., de la C Cuellar, V. E., Rivero, C. C. J., Fresneda, Q. C., & Terrero, M. W. (2014). Efecto de microorganismos eficientes (ME-50) sobre la morfología y el rendimiento del cultivo del arroz (Oryza sativa) en Aguada de Pasajeros. Revista Científica Agroecosistemas, 2(2), 327-336, ISSN: 2415-2862.).

En el cultivo del henequén estas potencialidades del uso de los ME pueden aportar resultados muy favorables para la industria henequenera de manera general. En las tecnologías que hoy se aplican, totalmente carentes de insumos para la compra de fertilizantes, plaguicidas y para el empleo de la biotecnología, etc., la posibilidad de contar con sustancia estimuladoras del crecimiento de origen natural y de fácil adquisición pudiera aportar dividendos considerables para la Empresa Nacional de Fibras Naturales, responsable de la industria henequenera en el país.

Sin embargo, a pesar de los criterios favorables emitidos por los resultados obtenidos en esta investigación, en todos los indicadores evaluados no se comportó de la misma manera, en lo que pudo haber influido las condiciones de altos niveles de enyerbamiento en que se desarrolló la etapa experimental en los últimos meses (junio- septiembre del 2022), por no contar con los insumos necesarios para su control.

Sobre esta situación real que se presenta hoy en los viveros de las UEB productora de henequén en la provincia, es importante señalar que aunque los estimuladores del crecimiento se consideren una diversidad de productos que actúan sobre la fisiología de las plantas, aumentan su desarrollo, mejoran su productividad en la calidad del fruto y además contribuyen a mejorar la resistencia de las especies vegetales ante diversas enfermedades, su efecto puede verse limitado si no se cumple con la disciplina tecnológica del cultivo, además de las exigencias ecofisiológicas de la especie, lo que puede ser de mayor relevancia en especies como el henequén, que son plantas xerófitas de crecimiento lento y que realizan el metabolismo ácido de las crasuláceas (CAM); en este sentido el control de la vegetación indeseable, sobre todo las gramíneas, durante el aviveramiento de las plántulas de henequén, si no se logra de manera eficiente, puede inducir muerte o raquitismo por asfixia y competencia por la luz y nutrientes etc y finalmente afectar la supervivencia y la disponibilidad de plántulas de calidad para las plantaciones de fomento y la sostenibilidad del cultivo y de la industria.

CONCLUSIONES